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2026年10月28日  |  健康热线:400-000-0000

驱动改变检出率80.3%!肺混合性黏液与非黏液腺癌研究:DNA+RNA测序补充检出融合,揭示两种成分同源却免疫微环境不同

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摘要

混合性浸润性黏液腺癌和非黏液腺癌(混合型IMA/NMA)是一种罕见的肺腺癌(LUAD)亚型,现有数据有限。本研究旨在全面分析这一罕见实体的特征。共纳入738例手术病例,包括349例纯浸润性黏液腺癌(IMA)、61例混合型IMA/NMA及328例纯非黏液腺癌(NMA)。通过扩增阻滞突变系统、组织化学,以及基于DNA/RNA的下一代测序(DNA和RNA NGS),发现混合型IMA/NMA相较于IMA及NMA具有不同的分子特征,尤其体现在EGFR、KRAS和ALK改变以及PD-L1表达状态方面。采用DNA和RNA NGS对混合型IMA/NMA病例中的IMA与NMA成分进行配对分析,发现同一肿瘤的两种成分之间存在1至3个共同的基因组改变。然而,两种成分在癌相关成纤维细胞、促肿瘤细胞因子、MHC-II、共激活分子、T细胞及效应细胞水平方面存在显著差异。同样,多重免疫荧光检测显示,NMA成分中的免疫细胞浸润,包括CD4+和CD8+ T细胞,显著高于IMA成分。术后随访显示,NMA与混合型IMA/NMA病例之间的无病生存期(DFS)或总生存期(OS)无显著差异;但与IMA病例相比,两组的DFS(P = 0.011)和OS(P = 0.027)均显著缩短。综上,本研究全面表征了混合型IMA/NMA的分子谱、克隆相关性、肿瘤异质性及手术结局,可能为这一罕见LUAD亚型的与治疗策略提供依据。

引言

肺癌仍是全球最常见的恶性肿瘤之一,LUAD是其最常见的组织学亚型。根据组织病理学特征,LUAD可分为IMA、NMA,以及混合性浸润性黏液和非黏液腺癌(混合型IMA/NMA)。NMA是LUAD的主要形式,而IMA约占LUAD病例的5%。混合型IMA/NMA定义为黏液性和非黏液性成分均占10%以上,是一种罕见的LUAD亚型。

纯NMA的组织形态主要包括贴壁型、腺泡型、乳头型、微乳头型和实性腺癌等经典亚型。相比之下,纯IMA具有独特的组织形态学特征。在临床上,与NMA相比,IMA更常发生于肺下叶,并与累及双肺的多灶性病变相关。目前对IMA分子特征的认识,主要依赖样本量有限的研究。一项纳入迄今最大IMA患者队列(n = 200)的研究,采用序贯多平台分子检测分析组织样本,包括基于DNA的NGS(DNA NGS)及RNA NGS。该研究显示,与NMA相比,IMA具有独特的分子谱,其特征为常见KRAS突变、NRG1融合及HER2突变。然而,关于混合型IMA/NMA分子特征的研究仍然十分匮乏。

此外,混合型IMA/NMA由两种不同成分组成:IMA成分和NMA成分。两者的克隆关系及基因组异质性仍不明确。已有研究探讨LUAD的肿瘤免疫微环境(TIME)特征,揭示其与组织学亚型及特定遗传改变密切相关。然而,这些分析主要集中于NMA,对IMA免疫微环境的研究仍然不足。此外,同一混合型IMA/NMA病例中的IMA和NMA成分究竟具有相似的TIME特征,还是表现出不同特征,尚不清楚。另外,新出现的临床数据主要着眼于探讨NMA和IMA的生存预后。然而,关于混合型IMA/NMA临床结局的研究仍然缺乏。

本研究旨在将混合型IMA/NMA与纯IMA及NMA进行比较,探讨其临床病理特征、分子谱及生存结局。此外,我们还希望探究混合型IMA/NMA中IMA和NMA成分之间的克隆相关性及肿瘤内异质性(图1)。通过这些分析,我们希望全面解析这一罕见LUAD亚型的特征。

原文图1(含完整英文说明)

结果

混合型IMA/NMA的临床病理特征

根据肿瘤病理亚型,738例LUAD中,349例归类为IMA、328例为NMA、61例为混合型IMA/NMA。对三组的临床病理特征进行了比较(表1)。年龄分布未见显著差异。然而,混合型IMA/NMA更常见于男性(57.4%,而IMA为39.3%、NMA为37.2%;P = 0.006),与其他两组相比,其有吸烟史的比例更高(37.7%,而IMA为24.4%、NMA为30.5%;P = 0.047),临床分期较晚的比例也更高(39.3%,而IMA为11.2%、NMA为10.4%;P < 0.001)。

原文表1(含完整英文说明)

混合型IMA/NMA的分子特征

全部738例LUAD首先接受常规实验室检测[采用扩增阻滞突变系统(ARMS)检测EGFR、KRAS和BRAF突变,采用免疫组织化学(IHC)检测ALK融合],随后接受DNA NGS。对驱动改变阴性的病例进一步开展RNA NGS,以表征IMA、NMA及混合型IMA/NMA的驱动改变(图2a)。三组表现出不同的分子谱(图2b)。在IMA病例中,ARMS和IHC在63.0%(220/349)的病例中检出驱动改变,主要为KRAS突变(46.4%)和ALK融合(13.8%)。DNA NGS在额外13.5%(47/349)的IMA病例中检出驱动改变,主要涉及HER2突变(3.7%)、RET融合(3.2%)及NRG1融合(3.2%)。RNA NGS进一步在1.7%(6/349)的IMA病例中检出驱动改变,包括FGFR2融合(n = 4)、NRG1融合(n = 1)和ROS1融合(n = 1)。在混合型IMA/NMA病例中,ARMS和IHC在70.5%(43/61)的病例中检出驱动改变,最常见为KRAS突变(24.6%)、ALK融合(23.0%)及EGFR突变(21.3%)。DNA NGS在额外8.2%(5/61)的病例中检出改变,RNA NGS又额外检出1个改变(1.6%,1/61),具体为SQSTM1-NTRK3融合。在NMA病例中,ARMS和IHC在79.0%(259/328)的病例中检出驱动改变,主要为EGFR突变(67.7%)。DNA NGS在额外11.9%(39/328)的NMA病例中检出驱动改变,RNA NGS又额外检出1个改变(0.3%,1/328),即CD74-ROS1融合(图2b)。总体而言,91.2%的NMA病例检出驱动改变,显著高于IMA(78.2%)和混合型IMA/NMA(80.3%,P < 0.001)(图2c)。值得注意的是,15例病例的EGFR突变由DNA NGS检出,但ARMS未检出,主要涉及EGFR第20外显子插入突变(表S1)。从变异类型看,这些病例中未检出MET扩增。IMA(24.4%)和混合型IMA/NMA(29.5%)组中基因融合(ALK、ROS1、RET、NRG1、NTRK及FGFR2)的比例均高于NMA组(6.7%,P < 0.001)。然而,NMA组中突变(EGFR、KRAS、BRAF、HER2及MET第14外显子跳跃)的检出比例(84.5%)高于IMA(53.9%)和混合型IMA/NMA(50.8%)组(P < 0.001;图2d)。

具体而言,EGFR突变呈梯度分布,NMA组发生率最高(68.6%,225/328),显著高于混合型IMA/NMA(26.2%,16/61)和IMA组(1.7%,6/349;P < 0.001;图2e)。相反,KRAS突变呈相反模式,IMA组频率最高(59.0%,206/349),其次为混合型IMA/NMA(29.5%,18/61)及NMA组(7.0%,23/328;P < 0.001;图2e)。进一步分析显示,KRAS G12C突变发生率在混合型IMA/NMA(9.8%,6/61)与IMA组(13.5%,47/349;P = 0.538)之间相似,但高于NMA组(2.1%,7/328;P = 0.008;图S1a)。相比之下,混合型IMA/NMA(3.3%,2/61)及NMA组(0.9%,3/328;P = 0.177)的KRAS G12D突变发生率显著低于IMA组(14.3%,50/349;P < 0.001;图S1b)。值得注意的是,混合型IMA/NMA组的ALK融合更常见(24.6%,15/61),高于IMA(15.5%,54/349;P = 0.094)及NMA组(2.7%,9/328;P < 0.001;图2e)。三组其他驱动改变未见统计学差异,可能与其发生率较低有关。此外,全部病例均通过IHC评估HER2、PD-L1和c-MET蛋白表达水平。混合型IMA/NMA、IMA及NMA组之间,c-MET或HER2表达未见显著差异(图S1c和S1d)。然而,与其他两组相比,混合型IMA/NMA组肿瘤细胞(TC)≥1%的患者比例最高(图2f)。

原文图2(含完整英文说明)

混合型IMA/NMA不同成分的基因组改变

为研究混合型IMA/NMA中不同组织学成分(IMA和NMA成分)的克隆关系,我们选择12例混合型IMA/NMA患者,通过显微切割分离每个肿瘤中的IMA和NMA成分(表S2,图3a)。对每种成分的样本开展DNA NGS。分析同一患者中的突变、融合及拷贝数变异(CNVs)。结果显示,同一患者的IMA和NMA成分之间存在1–3个共同遗传改变(图3b)。系统发育树分析表明,这些共同改变主要为驱动性遗传事件(9/12,75%),例如EGFR突变、ALK融合或KRAS突变(图3c)。这些发现强有力地支持,混合型IMA/NMA患者的IMA和NMA成分具有共同克隆起源。

原文图3(含完整英文说明)

混合型IMA/NMA不同成分的TIME

采用RNA NGS分析不同成分中免疫相关基因的RNA表达,以比较混合型IMA/NMA中IMA与NMA成分的TIME差异(n = 12,图4a)。两种成分之间的T细胞炎症性基因表达谱(GEP)评分或肿瘤突变负荷(TMB)未见显著差异(图4b)。然而,NMA成分中的癌相关成纤维细胞(CAFs)、促肿瘤细胞因子、共激活分子及MHC-II水平高于IMA成分。此外,NMA成分的效应细胞和T细胞水平显著高于IMA成分(图4c)。NMA与IMA成分之间未检出其他TIME相关因素的显著差异(图S2)。在癌症基因组图谱(TCGA)队列中,依据免疫细胞生物标志物表达评估纯IMA与纯NMA之间的TIME差异。结果显示,NMA病例中CD8+ T细胞、单核细胞、M1巨噬细胞和树突状细胞显著多于IMA病例(图S3),进一步支持NMA与IMA具有不同的TIME特征。为验证这些发现,对同一混合型IMA/NMA肿瘤中的IMA和NMA成分开展多重免疫荧光(mIF)检测(n = 10)。结果显示,无论肿瘤内还是瘤周区域,NMA成分的CD4+和CD8+ T细胞密度均高于IMA成分(图5a–d)。然而,无论肿瘤内还是瘤周区域,NMA与IMA成分之间CD20+、CD56+或CD68+细胞的表达水平均无统计学显著差异(图5e–j)。这些发现表明,同一混合型IMA/NMA肿瘤中的IMA与NMA成分可能具有不同的TIME。

原文图4(含完整英文说明)

原文图5(含完整英文说明)

混合型IMA/NMA的生存分析

在173例患者中评估手术结局,包括75例纯IMA、32例混合型IMA/NMA及66例纯NMA。三组基线临床病理特征未见显著差异(表S3)。IMA组的5年DFS和OS率分别为84.9%和88.6%,混合型IMA/NMA组分别为71.7%和72.0%,NMA组分别为60.7%和73.2%(DFS的P = 0.011;OS的P = 0.027)(图6a和b)。在具有驱动改变的患者中,这一趋势仍然存在:IMA组的5年DFS(85.7%,P = 0.006)和OS(88.0%,P = 0.038)显著优于混合型IMA/NMA组(DFS 79.1%,OS 73.7%)及NMA组(DFS 59.8%,OS 71.4%)(图6c和d)。按TNM分期进行的亚组分析中,IMA组ⅢA期患者的5年DFS(81.7%,P = 0.029)和OS(87.7%,P = 0.067)优于混合型IMA/NMA(DFS 52.1%,OS 53.5%)及NMA组(DFS 41.9%,OS 54.6%)(图6e和f),但OS差异未达到统计学显著性。对年龄、性别、吸烟史、驱动改变、分期及病理亚型等关键变量进行单因素及多因素分析,显示分期和病理亚型是DFS及OS的独立预后因素(表2)。混合型IMA/NMA与NMA均与较差的生存结局显著相关。

原文图6(含完整英文说明)

原文表2(含完整英文说明)

讨论

本研究显示,与IMA及NMA相比,混合型IMA/NMA具有不同的分子特征,表现为独特的驱动改变分布,尤其涉及EGFR、KRAS和ALK。此外,肿瘤内比较发现,同一混合型IMA/NMA病例中的IMA和NMA成分具有共同遗传改变,提示单克隆起源。然而,同一混合型IMA/NMA肿瘤的不同成分表现出异质性的肿瘤微环境,这可能导致对免疫治疗的临床应答存在差异。在临床上,混合型IMA/NMA的生存模式与NMA相似,但与IMA相比,其DFS和OS显著缩短。这些发现表明,混合型IMA/NMA在生物学及预后方面代表一种独特亚型。

已有报道指出,KRAS突变是IMA最常见的驱动改变,而NMA以较高的EGFR突变率为特征。然而,由于发生罕见,混合型IMA/NMA的分子谱仍不清楚。本研究通过分析包含NMA、IMA及混合型IMA/NMA的大型队列,发现混合型IMA/NMA表现出独特的、具有不对称特征的中间型分子特征。混合型IMA/NMA的KRAS突变率低于IMA,但高于NMA;其EGFR突变率低于NMA,但高于IMA。为全面表征混合型IMA/NMA的分子谱,开展了序贯多平台分子检测,包括ARMS、IHC、DNA NGS及RNA NGS。与ARMS等常规实验室方法相比,DNA NGS具有更广泛的突变检测能力,因此在临床实践中得到广泛应用。因此,在ARMS阴性病例中,通过DNA NGS发现了若干EGFR突变,尤其是在NMA及混合型IMA/NMA组中。此外,RNA NGS能够增强融合检测,已有研究显示,联合应用DNA和RNA NGS可提高LUAD中多种基因组改变的检出能力。然而,对于LUAD而言,最佳策略——序贯还是平行开展DNA和RNA测序——仍存在争议。在本队列中,混合型IMA/NMA和IMA的融合率显著高于NMA,支持基因融合常与LUAD黏液产生相关的观点。此外,在混合型IMA/NMA和IMA中,RNA NGS检出了更高比例的DNA NGS漏检融合,包括ROS1、NRG1、NTRK及FGFR2融合,主要归因于短读长测序技术的局限性。鉴于不同组织学亚型具有不同的驱动改变图谱和突变谱,有必要优化分子检测策略。RNA NGS在混合型IMA/NMA及IMA中增加检出率,提示全面分子谱分析,例如平行开展DNA和RNA测序,可能有益于这些LUAD亚型。

PD-L1表达已被确立为LUAD中与免疫检查点抑制剂应答相关的生物标志物。目前,仅有少量研究探讨IMA中的PD-L1表达,均报告IMA的PD-L1水平低于NMA。本研究结果显示,混合型IMA/NMA中PD-L1表达≥1%的患者比例高于纯IMA或NMA,提示混合亚型具有更偏免疫炎症性的肿瘤微环境。

迄今,尚无研究报道混合型IMA/NMA的克隆关系或肿瘤异质性。我们的DNA NGS分析发现,同一肿瘤中IMA与NMA成分之间存在1–3个共同体细胞改变,提示共同克隆起源。尽管具有共同祖先,每种成分仍携带不同的私有突变,支持由基因组不稳定性和微环境选择压力驱动肿瘤内异质性的模型。由于多数共同改变为驱动突变,靶向治疗理论上可能对两种成分均有效;然而,私有突变可能导致不同的治疗应答,并最终引起治疗耐药。仍需进一步研究,以评估不同组织学亚型(IMA、NMA和混合型IMA/NMA)对靶向治疗的临床应答。此外,采用RNA NGS和mIF比较混合型IMA/NMA病例中IMA与NMA成分的TIME。RNA NGS显示,两种成分在TIME相关因素方面存在明显差异。NMA成分富集CAFs、促肿瘤细胞因子、共激活分子、MHC-II、T细胞及效应细胞,这些特征与活跃的细胞免疫相关。相比之下,IMA成分表现为免疫荒漠表型。TCGA队列的转录组分析进一步证实,与IMA相比,NMA具有更高免疫活性。此外,mIF分析显示,NMA成分的CD4+和CD8+ T细胞密度高于IMA成分,进一步验证混合型IMA/NMA免疫微环境的肿瘤内异质性。

IMA发生率相对较低,有关IMA预后的研究有限,结论并不一致。Luo等及Cui等报告,IMA与NMA之间的OS或DFS无显著差异。相反,Xu等及Gow等发现,与NMA相比,IMA预后更好。值得注意的是,组织学分类标准及分期分层的差异可能导致这些不一致的预后结果。在既往部分研究中,混合型IMA/NMA未作为独立亚型分析,而被归入IMA。通过明确区分纯IMA、纯NMA及混合型IMA/NMA,本研究显示,IMA患者术后生存结局显著优于NMA患者。然而,混合型IMA/NMA患者的生存结局与NMA相当,DFS和OS显著差于IMA患者。在按驱动基因改变状态及辅助化疗(ⅢA期)进行分层后,这一生存趋势仍然存在。NMA及混合型IMA/NMA亚型均与较差的手术结局相关,提示NMA成分的存在可能促进更具侵袭性的生物学行为。

本研究存在若干局限性。首先,由于混合型IMA/NMA发生率极低,混合型IMA/NMA组样本量小于纯IMA和NMA组。其次,仅有12例混合型IMA/NMA可用于进一步比较IMA与NMA成分,限制了对克隆起源及肿瘤微环境特征的探索。第三,由于缺乏Ⅳ期病例,无法评估晚期疾病的生存结局。

综上,本研究揭示,与纯IMA及NMA相比,混合型IMA/NMA具有不同的分子及临床特征,尤其体现在性别、吸烟史、临床分期、EGFR/KRAS/ALK改变及PD-L1表达方面。此外,我们全面表征混合型IMA/NMA的克隆关系及异质性,发现同一患者的IMA与NMA成分在基因组图谱上具有克隆相关性,但在免疫微环境中表现出明显异质性。另外,与IMA相比,混合型IMA/NMA及NMA均具有更强的临床侵袭性,术后DFS和OS更短。这些发现为未来混合型IMA/NMA研究提供了有价值的见解,并对这一罕见LUAD亚型的精准诊断与管理具有重要意义。

材料与方法

患者

共纳入2019年1月至2024年9月在中国医学科学院北京协和医学院肿瘤医院接受治疗的738例LUAD患者。纳入标准为:(i)年龄≥18岁;(ii)已完成手术切除;(iii)病理确诊为混合型IMA/NMA、纯NMA或纯IMA;(iv)有足够肿瘤组织可用于组织学及分子分析。排除标准为:(i)肿瘤样本中肿瘤细胞含量低于20%;或(ii)接受过新辅助治疗。本研究按照《赫尔辛基宣言》的原则开展,获国家癌症中心/国家肿瘤临床医学研究中心/中国医学科学院北京协和医学院肿瘤医院伦理委员会批准(NCC-007943)。所有纳入研究的参与者均提供知情同意。

临床参数与组织病理学评估

全部临床数据,包括年龄、性别、临床分期及吸烟史,均从病历提取。手术切除后,所有样本经福尔马林固定、石蜡包埋,并进行苏木精–伊红(HE)染色。由两名有经验的病理医师独立作出病理诊断。当肿瘤同时包含黏液性及非黏液性成分,且每种成分均至少占肿瘤的10%时,诊断为混合型IMA/NMA。

IHC

采用IHC评估肿瘤组织中ALK、HER2、c-MET及PD-L1的蛋白表达。简言之,使用自动染色仪(Autostainer Link 48,Dako,丹麦),以针对ALK(Roche,瑞士巴塞尔)、HER2(Roche,瑞士巴塞尔)、c-MET(Roche,瑞士巴塞尔)及PD-L1(SP263,Ventana Medical Systems Inc,美国图森)的第一抗体对肿瘤组织切片进行染色。对于PD-L1表达,TC评分定义为样本中显示任意强度部分或完整细胞膜PD-L1染色的存活肿瘤细胞,占全部存活肿瘤细胞的百分比。TC < 1%时视为PD-L1表达阴性,TC ≥ 1%时视为阳性。对于HER2及c-MET表达,IHC染色强度分为0(无染色)、1+(弱)、2+(中等)或3+(强)。染色强度2+或3+的肿瘤记录为阳性,0或1+记录为阴性。对于ALK表达,按既往报道判定ALK阳性。全部结果均由两名有经验的病理医师独立评估。

ARMS

按照制造商说明,使用Concertbio DNA FFPE Tissue Kits(AmoyDx,中国福建)从肿瘤组织提取基因组DNA。分别使用人KRAS突变检测试剂盒(Accbio,中国北京)、人EGFR突变检测试剂盒(Accbio,中国北京)和人BRAF突变检测试剂盒(Accbio,中国北京),检测EGFR、KRAS及BRAF突变(表S4)。实时PCR按既往描述开展:95 °C初始变性5 min,随后进行40个循环,每个循环为95 °C 15 s及60 °C 1 min。按照制造商说明,依据阈值计数值判定突变。

基于杂交捕获的靶向NGS

分别从组织样本提取DNA和RNA。通过超声片段化、末端修复及PCR扩增构建预文库。使用DNA NGS的571基因panel(表S5)和/或RNA NGS的2660基因panel(表S6)对预文库进行杂交捕获,随后经PCR扩增及纯化生成最终文库。在Illumina平台开展测序。DNA NGS用于识别突变、基因融合、扩增及TMB(免疫检查点抑制剂疗效的潜在预测生物标志物,定义为肿瘤基因组每百万个测序碱基中的体细胞突变总数),RNA NGS用于评估与TIME相关的基因表达。T细胞炎症性GEP评分是一种反映肿瘤微环境免疫状态的特定基因表达特征,通过18个基因(TIGIT、CD27、CD8A、PDCD1LG2、LAG3、CD274、CXCR6、CMKLR1、NKG7、CCL5、PSMB10、IDO1、CXCL9、HLA-DQA1、CD276、STAT1、HLA-DRB1和HLA-E)的标准化表达值加权求和计算。同样,其他TIME相关因素,包括促肿瘤细胞因子(IL10、TGFB1、TGFB2、TGFB3、IL22、MIF及IL6)、共激活分子(CD28、CD40、TNFRSF4、ICOS、TNFRSF9、CD27、CD80、CD86、CD40LG、CD83、TNFSF4、ICOSLG、TNFSF9及CD70)和效应细胞(IFNG、GZMA、GZMB、PRF1、GZMK、ZAP70、GNLY、FASLG、TBX21、EOMES、CD8A和CD8B),也通过其标准化表达值的加权和进行量化。

mIF

采用mIF表征TIME中的免疫细胞亚群。使用PANO 7-plex IHC Kit(Panovue,中国北京)检测PanCK、CD4、CD8、CD20、CD56及CD68。依次应用第一抗体,随后孵育辣根过氧化物酶偶联的第二抗体,并进行酪胺信号放大(TSA)。标记全部靶抗原后,以DAPI复染细胞核。使用配备UPLXAPO 20×物镜的Olympus VS200扫描仪(Olympus,德国)获取全切片荧光图像,并使用QuPath软件分析。采用PanCK界定肿瘤区域,分别计算肿瘤内及瘤周区域的细胞密度。

患者随访

依据包括DFS及OS在内的生存终点评估手术结局。全部ⅢA期患者术后均接受辅助化疗。通过病历或电话访谈获取患者生存状态。随访时间从术后第1天至2026年2月15日,中位随访时间为60.0个月(95%置信区间[CI]55.7–63.0个月)。DFS定义为从手术至首次发生局部复发或远处转移的时间;OS定义为从手术至任何原因死亡的时间。

TCGA队列

通过cBioPortal从TCGA获取NMA(n = 67)及IMA(n = 16)的临床和转录组数据。数据使用遵循TCGA发表指南及NIH基因组数据使用者行为准则。TCGA数据库中未识别出混合型IMA/NMA亚型病例,可能与其罕见性有关。

统计学分析

采用SPSS 25.0软件(IBM,美国伊利诺伊州芝加哥)进行统计分析。使用卡方检验比较性别、年龄、临床分期及吸烟史等临床数据。使用卡方检验检测并比较三组肿瘤组织中的突变。采用配对t检验评估同一混合型IMA/NMA中黏液性及非黏液性成分的GEP评分、TMB及免疫学标志物表达水平。采用Cox比例风险回归模型开展单因素及多因素分析。统计学显著性定义为双侧P值<0.05。

实体瘤DNA1299+RNA1560基因检测、实体瘤DNA880+RNA1560基因检测以及实体瘤272plus+RNA1560基因检测项目,基于杂交捕获建库+NGS测序,提取DNA样本,检测基因点突变、插入缺失等变异,同时提取RNA样本,检测至少1560种已知和数百个基因相关未知融合变异,面向所有实体瘤患者,预测可能获益的靶向、免疫、化疗等治疗方案,同时辅助预后和遗传风险评估。肺癌DNA39+RNA16基因检测项目,检测面向肺癌,采用 DNA+RNA 双组学同步共检技术,DNA 层面可精准检测39个基因的单核苷酸变异(SNV)、小片段插入缺失(indel),同时覆盖部分基因的扩增等;RNA 层面则针对性检测16个基因的已知融合变异,显著提升融合基因检出的灵敏度与准确性,有效弥补单一组学检测短板,辅助临床靶向治疗和预后评估。

本文引用

Shi X, Wang Y, Yao N, et al. Molecular characteristics, clonal relatedness and surgical outcomes of pulmonary mixed invasive mucinous and non-mucinous adenocarcinoma: a retrospective cohort study. Molecular Biomedicine. 2026;7:65. doi:10.1186/s43556-026-00460-1.